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Cellmax:原代細(xì)胞培養(yǎng)技術(shù)

發(fā)布時(shí)間: 2023-11-06  點(diǎn)擊次數(shù): 411次


 

原代細(xì)胞培養(yǎng)的應(yīng)用

1、為研究生物體細(xì)胞的生長、代謝、繁殖提供有力的手段;

2、為傳代培養(yǎng)創(chuàng)造條件;

3、服務(wù)于臨床實(shí)踐,用于藥物篩選等。

  

 

 

01


 

原代細(xì)胞培養(yǎng)之取材

取材作為原代細(xì)胞培養(yǎng)過程中的第一部至關(guān)重要,以下幾種取材技術(shù),你都用過哪些方法呢?

各類組織取材,操作及注意事項(xiàng):

1.皮膚和粘膜

主要取皮片,面積一般2~4平方厘米。

2.內(nèi)臟和實(shí)體瘤

(1)無菌環(huán)境;

(2)熟悉所需組織的類型和部位;

(3)要避開破潰、壞死液化部分,以防污染,盡量去除混雜的結(jié)締組織。

3.血液細(xì)胞

一般多抽取靜脈外周血,或從淋巴組織中(如脾、扁桃體、胸腺、淋巴結(jié)等)分離細(xì)胞,取材時(shí)應(yīng)注意抗凝。

4.骨髓、羊水、胸/腹水細(xì)胞

嚴(yán)格無菌,注意抗凝,還要盡快分離培養(yǎng),離心后,用無鈣、鎂PBS洗兩次,再用培養(yǎng)液洗一次后即可培養(yǎng),不宜低溫存放。

 

5.動物組織取材——鼠胚組織

(1)用引頸或氣管窒息致死法處死孕期合適的動物;

(2)將其浸泡在含有75%酒精的燒杯中,5分鐘后取出動物;

(3)在消毒過的木板上可用無菌的圖釘或大頭針固定四肢,切開皮膚;

(4)用無菌操作法解剖取胚。

 

6.動物組織取材——幼鼠胚腎(或肺)

幼鼠采用上述方法處死消毒后→腹部朝上固定在木板上,先切開游離毛皮并拉開至兩側(cè)→采用無菌法打開胸腔取肺,或從背部打開腹腔取腎。

 

7.雞(鴨)鳥類胚胎組織

(1)取孵化至適當(dāng)胚齡(9~12天)的胚蛋,用照蛋燈在暗處燈檢,若有豐富血管、胚體有運(yùn)動的胚蛋,說明胚體發(fā)育良好,并用有色筆劃出氣室和胚體位置;

(2)將胚蛋置于蛋架上,先用溫水清洗蛋殼,再用75%酒精棉球擦干;經(jīng)碘酒、75%酒精消毒后,在無菌條件下采用無菌法用剪刀或鑷子打開氣室,沿氣室邊緣去除蛋殼;

(3)用眼科撕去殼膜,暴露出雞胚;

(4)用彎頭輕挑起胚頭,取出胚胎,放入無菌平中,解剖取材。

    小鼠小膠質(zhì)細(xì)胞

  

大鼠血管平滑肌細(xì)胞

 

02

 

原代細(xì)胞培養(yǎng)之分離注意事項(xiàng)

1.組織塊培養(yǎng)

(1)組織塊接種后的前3天,在觀察和移動的過程中,注意不要引起液體的振蕩。要避免經(jīng)常翻動和振動,否則組織塊不易附著于瓶壁上或附著后也會脫落飄起。

(2)加入的培養(yǎng)液不宜過多,避免浸泡的組織塊受輕微的波動而脫落下來。

(3)當(dāng)細(xì)胞向外遷徙出來后要注意記錄并去除漂浮的組織塊和殘留的細(xì)胞,它們產(chǎn)生的有毒物質(zhì)會影響原代細(xì)胞的生長。

(4)為促進(jìn)組織塊盡快粘貼在培養(yǎng)瓶上,可以在種植前先將膠原薄層涂在培養(yǎng)瓶底壁上。

  

2.貼壁型原代細(xì)胞

(1)原代培養(yǎng)的分離細(xì)胞在初次接觸體外環(huán)境時(shí),它們之間會互相影響,在這些細(xì)胞之間能產(chǎn)生一些促生長的活性物質(zhì),使細(xì)胞彼此互相促進(jìn)存活和生長。如果接種的細(xì)胞密度過低,細(xì)胞之間的促生長作用很小,也很難使細(xì)胞適應(yīng)從體內(nèi)的組織環(huán)境到被分散后進(jìn)入獨(dú)立生存環(huán)境的變化過程。如果接種的細(xì)胞密度過大,會導(dǎo)致營養(yǎng)物質(zhì)供應(yīng)不足,代謝廢物積累較快需要經(jīng)常換液和傳代。

(2)適當(dāng)增大原代培養(yǎng)接種的細(xì)胞密度,給培養(yǎng)的細(xì)胞提供更多的類似于在體內(nèi)時(shí)細(xì)胞之間的相互作用,會極大提高原代培養(yǎng)的細(xì)胞在體外存活率。待細(xì)胞適應(yīng)體外環(huán)境后進(jìn)行傳代培養(yǎng)時(shí)再以較低的密度接種和培養(yǎng)。

(3)盡快使接種的細(xì)胞貼壁,是決定培養(yǎng)能否成功的關(guān)鍵??梢栽诮臃N后先將培養(yǎng)瓶置培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)3h到5h,待細(xì)胞貼壁后,再補(bǔ)足培養(yǎng)液繼續(xù)培養(yǎng)。

 

3.懸浮型原代細(xì)胞

(1)必須保持細(xì)胞的懸浮狀態(tài)??梢酝ㄟ^增加培養(yǎng)液的黏度來幫助細(xì)胞呈懸浮狀態(tài),如給培養(yǎng)液中加入低濃度的透明質(zhì)酸復(fù)合物。在有攪拌裝置的培養(yǎng)器皿內(nèi)加入培養(yǎng)液是,以5ml為限度,否則攪拌時(shí)會產(chǎn)生氣泡對細(xì)胞造成傷害。使用這種方式需注意勿使攪拌速度過快,否則即可使培養(yǎng)液溢出又容易造成污染。如果培養(yǎng)液的量在5ml以下,可以采用旋轉(zhuǎn)瓶培養(yǎng)。給懸浮培養(yǎng)的細(xì)胞換液時(shí)要注意不要吸出細(xì)胞。

(2)能夠進(jìn)行懸浮培養(yǎng)的細(xì)胞,其生命力一般都比較旺盛,體外分裂增殖的速度較快,營養(yǎng)成分消耗大,換液時(shí)間隔一般較短。

 

 

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